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Sacha Reichman

Chef de groupe, Ingénieur de recherche
Équipe de recherche
Développement et régénération de la rétine : apport des cellules souches pluripotentes
Domaines de spécialité
Recherche de molécules actives pour le traitement des maladies dégénératives de la rétine (Rétinopathies pigmentaires, Rétinopathie diabétique, Dégénérescence maculaire liée à l’âge, DMLA).

Biographie scientifique

Travaillant sur la rétine depuis 2004, Sacha Reichman a installé la génération et la culture de cellules souches pluripotentes induites (iPS) humaines à l'Institut de la vision en 2011. Il a développé une méthode innovante de différenciation des cellules souches iPS humaines en organoïdes rétiniens : mini-rétines in vitro (Reichman et al., PNAS 2014 et Reichman et al., Stem Cells 2017). Son groupe se concentre sur la recherche de médicaments et développe des modèles de maladies dégénératives rétiniennes in vitro pour des campagnes de criblage à haut débit (HTS) de petites molécules à potentiel thérapeutique. Ces développements visent à prévenir et traiter les maladies rétiniennes héréditaires ou complexes telles que la rétinite pigmentaire, la rétinopathie diabétique et la dégénérescence maculaire liée à l'âge, DMLA.

En 2023, le groupe de Sacha Reichman a mis au point des conditions de cultures innovantes créant une lignée de cellule rétinienne multipotente cryopréservable (Gozlan et al., Commun. Biol 2023). Cette lignée de progéniteurs rétiniens est capable de produire tous les types cellulaires qui composent la rétine et particulièrement les précurseurs de photorécepteurs, en très grand nombre, indispensables pour la recherche de traitement pharmacologique et le développement de la médecine régénérative.

Depuis 2019, Sacha Reichman dirige un groupe de recherche dans l'équipe d’Olivier Goureau (Développement et régénération de la rétine). Le groupe est composé d'une doctorante (Marilou Clémençon) et de 2 ingénieurs (Marie Rozen et Jeremy Brogard).

Expertises

  • Modélisation in vitro de maladies dégénératives rétiniennes humaines par l’utilisation d’organoïdes rétiniens (mini-rétines) dérivée de cellules souches iPS.
  • Développement de tests automatisables pour le criblage à haut débit de composés pharmacologiques à potentiel thérapeutique.
  • Création de librairies cellulaires rétiniennes humaines dérivées de cellules iPS pour le développement de thérapies innovantes.

References

Top 5 des publications des 5 dernières années :

  • Gozlan S, Batoumeni V, Fournier T, Nanteau C, Potey A, Clémençon M, Orieux G, Sahel JA, Goureau O, Roger JE, Reichman S. Bankable human iPSC-derived retinal progenitors represent a valuable source of multipotent cells. Commun Biol. 2023.
  • Monfort T, Azzollini S, et al., Reichman S, Thouvenin O, Grieve K. Dynamic full-field optical coherence tomography module adapted to commercial microscopes allows longitudinal in vitro cell culture study. Commun Biol. 2023.
  • Groux K, Verschueren A, Nanteau C, Clémençon M, Fink M, Sahel JA, Boccara C, Paques M, Reichman S, Grieve K. Non invasive live imaging of a novel RPE stress model with Dynamic Full-Field OCT. Commun Biol, 2022.
  • Couturier A, Blot G, Vignaud L, Nanteau C, Slembrouck-Brec A, Fradot V, Acar N, Sahel JA, Tadayoni R, Thuret G, Sennlaub F, Roger JE, Goureau O, Guillonneau X, Reichman S. Reproducing diabetic retinopathy features using newly developed human induced-pluripotent stem cell-derived retinal Müller glial cells. Glia. 2021.
  • Scholler J, Groux K, Goureau O, Sahel JA, Fink M, Reichman S, Boccara C, Grieve K. Dynamic full-field optical coherence tomography: 3D live-imaging of retinal organoids. Light Sci Appl. 2020

Publications princeps

  • Reichman S, Terray A, Slembrouck A, Nanteau C, Orieux G, Habeler W, Nandrot EF, Sahel JA, Monville C, Goureau O. From confluent human iPS cells to self-forming neural retina and retinal pigmented epithelium. PNAS, 2014.
  • Reichman S, Slembrouck A, Gagliardi G, Chaffiol A, Terray A, Nanteau C, Potey A, Belle M, Rabesandratana O, Duebel J, Orieux G, Nandrot EF, Sahel JA, Goureau O. Generation of Storable Retinal Organoids and Retinal Pigmented Epithelium from Adherent Human iPS Cells in Xeno-Free and Feeder-Free Conditions. Stem Cells, 2017.
  • Gagliardi G, Ben M'Barek K, Chaffiol A, Slembrouck-Brec A, Conart JB, Nanteau C, Rabesandratana O, Sahel JA, Duebel J, Orieux G, Reichman S, Goureau O. Characterization and Transplantation of CD73-Positive Photoreceptors Isolated from Human iPSC-Derived Retinal Organoids. Stem Cell Reports, 2018.

Brevets

  • WO2014174492A1: Methods for obtaining retinal progenitors, retinal pigmented epithelial cells and neural retinal cells (2013, inventeur principal).
  • WO2018149985A1: Feeder-free methods for obtaining retinal progenitors, retinal pigmented epithelial cells and neural retinal cells (2017, inventeur principal).
  • WO2019170766A1: Compositions and methods for efficient amplification of retinal progenitor cells (2018, inventeur principal).

Financements

Agence National de Recherche (ANR JC-JC, ANR PRC), Fondation Retina France, Institute Carnot, Fondation Voir et entendre, IHU ForeSight, Fondation de France, SATT-Lutech, Fondation Valentin Haüy, Bouygues.